Trabajando con deberes pendientes.

Hola a tod@s.
Para hacer un poco mas llevadera la situación y al no poder desplazarnos al monte a por muestras, creo que es la ocasión de trabajar con temas que en su momento no pude identificar por variados motivos.
Empezamos con una que el desenlace ha sido desconcertante, las imágenes son de un Poliporal sobre un tronco tomadas el 9 de Noviembre de 2019, llevo visitando la zona donde recogí la muestra muchos años y no he visto nunca nada que no sea Buxus sempervirens y Pinus pinaster, aunque cuando vaya de nuevo a la zona voy a prestar una especial atención a la flora del sotobosque, ya que la secuenciación de la muestra ha determinado que se trata con un 100% de coincidencia de Coriolopsis gallica. La Coriolopsis gallica ya he estudiado en un par de ocasiones con el micro, siempre de muestras obtenidas en una ocasión en soto fluvial y la otra en un árbol ornamental de mi ciudad.

Además de que Ryvarden la sitúa sobre Acacia, Acer, Aesculus, Alnus, Fagus, Fraxinus, juglans, Olea, Pistacia, Platanus, Populus, Quercus, Robinia, Salix, Ulmus y también sobre árboles exóticos en parques y jardines, en ningun momento menciona Pinus y tampoco Buxus, otro dato que no encaja es el tamaño esporal que Ryvarden lo sitúa en 10-16 x 3-5 μm. Y en mi caso las espras obtenidas además por esporulación natural medían:
(7.4) 7.6 - 9.2 (9.6) × (2.7) 2.9 - 3.5 (3.7) µm
Q = (2.3) 2.35 - 2.8 (3) ; N = 20
Me = 8.3 × 3.2 µm ; Qe = 2.6
Ninguna de ellas llegaba a las 10 µm. , todo lo contrario a los dos estudios anteriores que realicé a la especie, ya que de los dos estudios realizados las esporas con menor tamaño medían 10;12,7 X 3,2;3,9 µm. todas por encima de las 10 µm. y de acuerdo con el trabajo de Ryvarden.

Y mas desconcertante si cabe es la siguiente, en esta ocasión al mandar a secuenciar la muestra ya indiqué en mi correo a Pablo que la microscopía encajaba con la de Radulomyces confluens, aunque por su aspecto y el sustrato donde aparecía la tuve que descartar. De nuevo la secuenciación ha determinado que efectivamente se trataba de Radulomyces confluens.
Las imágenes tomadas el 1 de Diciembre de 2019 sobre una piña de conífera.

Ningún autor sitúa la Radulomyces confluens sobre madera de coníferas y mucho menos ya sobre una piña.
Las esporas en mi estudio midieron:
(7.5) 7.7 - 8.6 (8.7) × (5.7) 6 - 6.5 (6.6) µm
Q = (1.2) 1.3 - 1.38 (1.4) ; N = 31
Me = 8.2 × 6.2 µm ; Qe = 1.3

Seguimos con una especie fotografiada el 29 de septiembre de 2019, en un tronco de probablemente Crataegus monogyna
Estromas agrupados de color negro, verrucosos y alargados.
Ascas octospóricas y paráfisis hialinas y cilíndricas sobresaliendo por encima del nivel de las ascas.
Ascosporas alantoides, hialinas y con dos gotas en los extremos, con unas medidas de:
(4.8) 5.3 - 6 (6.1) × (1.2) 1.3 - 1.5 µm
Q = (3.1) 3.5 - 4.4 (4.9); N = 20
Me = 5,7 × 1,4 µm; Qe = 4
En conversación privada con Jacques Fournier el se inclina por Diatrype, de especies de Diatrype con medidas esporales parecidas tenemos la Diatrype stigmatoides, al parecer exclusiva de Quercus, la Diatrype spilomea que la sitúan sobre Acer y la Diatrype undulata exclusiva de Betula, ninguna sobre Crataegus, aun con todos los datos en esta ocasión no puedo pasar de Diatrype sp.


Una Galerina del 1 de Noviembre de 2019, que a pesar de no presentar anillo, todos los parámetros y en especial los queilocistidios con unas medidas de (41.1) 46.3 - 65.3 (65.8) × (6.3) 6.5 - 10.6 (11.1) µm, así como las claves del género me llevan solo a la Galerina uncialis.
En este nuevo estudio sus esporas con unas medidas de:
(8.2) 8.3 - 9.4 (10.1) × (4.6) 5.2 - 5.7 (6.1) µm
Q = (1.5) 1.54 - 1.8 (1.9) ; N = 30
Me = 8.8 × 5.4 µm ; Qe = 1.6


Una Lepiota fotografiada el 8 de Diciembre en el Entorno Mirandés, la pobre ya no estaba en su mejor momento lo que hace mas difícil su correcta identificación, con unos queilocistidios de (17.3) 19.3 - 26.1 (28) × (8) 9.1 - 10.8 (11) µm. , esporas con unas medidas de (5.2) 6.3 - 8 (8.4) × (3.2) 3.3 - 4.2 (4.5) µm. y la morfología de la pileipellis, las claves de FungaNordica me llevan a la Lapiota xanthophylla


Un Corticial fotografiado el 19 de Mayo de 2019, sobre un tronco tumbado (probable Alnus glutinosa) y en cauce fluvial.
Todo parece encajar a la perfección con el Granulobasidium vellereum, lo único que me suscita alguna duda son los basidios que en solución de Rojo Congo diluido no presentan las granulaciones en su interior que dan orígen a su nombre, estas granulaciones por contra son bien visibles en agua destilada y en Melzer.


Dejo un resumen de su microscopía:

Las Clamidosporas con unas medidas de:
(6.5) 7.3 - 9 (10.1) × (4.4) 5.2 - 6.5 (7.7) µm
Q = 1.2 - 1.5 (1.8) ; N = 40
Me = 8 × 5.8 µm ; Qe = 1.4
Y las basidiosporas medidas en agua destilada:
(5.1) 5.2 - 6.2 (7.8) × (4.2) 4.7 - 5.6 (6) µm
Q = 1 - 1.2 (1.3) ; N = 40
Me = 5.7 × 5.1 µm ; Qe = 1.1

Una complicada Mollisia, en soto fluvial, fotografiada sobre un tronco tumbado donde predominaban los Alnus y Populus.
Pequeños apotecios de 0.7 a 1.7 mm. con forma de disco con tendencia a deformarse por presión de unos ejemplos con otros, color gris azulado con el borde ligeramente más oscuro.
Pelos marginales cortos, con ninguno o un solo septo, terminando en formas redondeadas y con unas medidas desde 9.1 - 16.1 × (3.5) 3.52 - 4.6 µm.
Excípulo ectal de textura globosa, con células ligeramente pigmentadas y unas medidas de (7.9) 8.5 - 10.4 (11.8) × (7.5) 7.7 - 9.6 (10.1) µm
Ascas octospóricas, biseriadas, con reacción del dispositivo amiloide apical tanto al Melzer como al IKI, con croziers (+), y unas medidas de (41) 42.6 - 54.8 (55.8) × (4.4) 4.7 - 5.6 (6) µm.
Paráfisis filiformes, sin ensanchamientos, terminando en formas redondeadas, con contenido en su interior mas visible en IKI, sobresaliendo por encima del nivel de las ascas y con unas medidas de (49.5) 49.9 - 63.9 (65.8) × (2.7) 2.9 - 3.5 (3,7) µm.
Ascosporas con poco contenido de aceite (0-1) y con unas medidas de esporas obtenidas por esporulación natural de:
(7.2) 7.4 - 9.4 (9.8) × (2.2) 2.23 - 2.6 (2.9) µm
Q = (2.8) 3 - 3,8 (4,3); N = 40
Me = 8.3 × 2.4 µm; Qe = 3.4
Por la no reacción al KOH al aplicarlo sobre los apotecios, como todos los demás datos obtenidos me hacen pensar en la Mollisa cinerea, lo único que no termina de encajar con la especie son al parecer las diminutas gotas de aceite en las ascosporas, que deberían ser completamente lisas (aceite 0), así que queda a falta de secuenciación como Mollisia cf. cinerea


Y su microscopía:


Y para terminar una Psathyrella, fotografiada el 24 de Noviembre de 2019, en suelo calcáreo arenoso y entre restos de caña común.
Con sombrero de 2 a 3 cm. con fibrillas radiales y mas oscuro en el centro. Con queilocistidios con unas medidas de (22.9) 23 - 35.1 (40.1) × (8.8) 9.8 - 15.6 (15.8) µm, pleurocistidios presentes con unas medidas de 49.7 - 51.46 (51.5) × (10.8) 10.82 - 13.6 µm. y esporas elipsoides, con poro germinal central, algunas deprimidas por un lado y unas medidas de :
(7.3) 7.8 - 9 (9.2) × 4.4 - 4.8 (4.9) µm
Q = (1.6) 1.7 - 1.9 (2) ; N = 30
Me = 8.3 × 4.6 µm ; Qe = 1.8
Atendiendo a las claves de Andreas Melzer, sitúa mi especie entre la Psathyrella arenosa y la muy parecida Psathyrella madida (asociada a Phragmites), aunque mas cerca de la primera, atendiendo al suelo y la microscopía obtenida queda pues como muy probable Psathyrella arenosa


Y un resumen de su microscopía:


Saludos a tod@s.

Gracias Juan Andrés, desde luego la secuenciación a veces nos confirma cosas muy difíciles de explicar y que ni tan siquiera nos atrevemos a defender con un simple análisis microscópico.
Un abrazo