Radulomyces molaris = Cerocorticium molare y algunas mas

Gracias Javier por mostrarnos las imágenes con el resultado de tus mediciones, no sé pero a mí me da la sensación de que a la hora de medirlas has escogido las de mayor tamaño, por si te sirve de consejo yo siempre escojo una espora del centro de la imagen y mido siempre las 15 o 20 más próximas a ella, siempre asegurándome que no se presenten ladeadas. De esta forma la medición resulta siempre más fiable que escogiéndolas al azar, ya que muchas veces sin querer solo escogemos las mas guapas .
Un fuerte abrazo

De nuevo gracias Josep, cierto es que he escogido las esporas mas hermosas pero insisto en que en este enlace de esta web que tu conoces, el resultado de las medidas varían según si están en melzer, agua o rojo congo, en esta última el tamaño al parecer es notablemente inferior a las que están en agua destilada....pufff que lio no

guiahongosnavarra1garciabona.blogspot.co...aris-frmpchrist.html

Un abrazote

Gracias Jon Joseba, la Arachnopeziza viéndola después en foto es una seta realmente bonita, pero tonto de mi, que me la pude traer y someterla al micro y bien podía haber tachado un cromo nuevo....tardaré en perdonármelo
Un abrazote compi

Gracias Javier, perdona que sea tan tiquismiquis pero he querido poner un ejemplo práctico de como realizo mis mediciones, he capturado tu imagen y la he colocado en mi programa de mediciones, he añadido el calibrado con la regla a 600 aumentos (tal y como es en la imagen), con el siguiente resultado.
Dejo la imagen.


Como podrás comprobar he dibujado un círculo y he medido todas las que se encuentran en su interior, el resultado ha sido el siguiente
9,4X5,9 ; 10,1X6,3 ; 9,3X6,7 ; 9,8X6,3 ; 9,9X5,4 ; 10X6,1 ; 10,4X6,4 ;10X6,3 ; 9,8X6,1 ; 10,2X6,5 ; 10,7X5,5 ; 9,8X6,3 ; 10,2X7,1;9 , 8X5,9 ; 11,4X6,8 ; 10,4X6,3 ; 9,6X6,7 ; 10,9X6,2 ; 10,2X6,2 ; 10X6,1 y 10,4X6,1.
En resumen 9,3(9,8;10,7)11,4 X 5,4(6,1;6,8)7,1, con una media de M=10,11X6,25.
Como podrás comprobar mi resultado difiere un poco del tuyo.
Si bien es cierto que utilizo el blog de Garcia Bona para contrastar mis resultados, siempre busco otros autores para compararlos, te dejo unos enlaces de otros autores de Radulomyces molaris, con notables diferencias de unos a otros, y algunos con medidas más acordes a las que nos presentabas.
translate.google.es/translate?hl=ca&sl=i...st-1960/&prev=search
ohoubach.blogspot.com.es/2011/04/radulomyces-molaris.html
www.fauneflore-massifcentral.fr/mycologi...m-p-christ-1960.html
Te dejo también un Pdf. con información de la especie.

Un fuerte abrazo

Excelente Josep y para nada te disculpes pues es conveniente compartir conocimientos y experiencias y así corregir posibles errores y de esto quiero hablar, pues en mi caso he detectado que a la hora de calibrar mis muestras, las medidas salen ligeramente superiores a como debería ser, el ligero fallo puede verse si pudiéramos como cortar la linea de referencia azul que se ve en la parte inferior de la imagen, así que es a qui el posible fallo. A partir de ahora tengo que tener en cuenta que a la hora de calibrar, debo irme muy poquito por debajo del 60 teniendo en cuenta que utilizo un objetivo de 600x.

Un abrazote figura, eres un maquina

Hola de nuevo Javier, atendiendo al detalle que comentas en cuanto a la calibración he advertido una diferencia de un 3%, te dejo de nuevo tu imagen y la medición que he realizado con mi programa, yo este lo he calibrado basándome en las 50 micras de la raya azul.



En este caso el resultado ha sido de
1 Longitud: 51,5831 micras
2 Longitud: 50,14223 micras

La medida de las 50 micras debería coincidir exactamente con los 3 cm. de la regla graduada, la línea de las 50 micras como la he usado para calibrar mi programa, el resultado al medirla ha sido "casi perfecto" (línea 2), en cambio mi medición sobre los 3 cm. (línea 1), arroja esta pequeña diferencia del 3%.
Es un dato que debes de tener en cuenta ante próximas mediciones.
Un abrazo